Calculadora de ensayo de Bradford: curva estándar y concentración de proteínas
Arma la curva estándar de BSA con tus absorbancias, obtén el ajuste lineal y el R², y convierte la absorbancia de tus muestras en concentración de proteína con su dilución.
Cómo funciona
Ajuste por mínimos cuadrados de los estándares: A = m × C + b; C de la muestra = (A − b) ÷ m × factor de dilución
En el ensayo de Bradford, el azul de Coomassie cambia de color en proporción a la proteína, pero solo es lineal en un rango limitado: más o menos de 100 a 1,000 µg/mL en el ensayo estándar y de 1 a 25 µg/mL en el microensayo. Ajusta una recta a los estándares, revisa el R² y lee solo las muestras que caen dentro de la curva; si alguna supera el estándar más alto, dilúyela y vuelve a medir. El colorante responde sobre todo a la arginina y a los residuos aromáticos, así que la BSA sobrestima algunas proteínas: si necesitas exactitud, usa la misma proteína como estándar.
Ejemplo resuelto
Ana prepara seis estándares de BSA de 0 a 1,000 µg/mL y obtiene la recta A₅₉₅ = 8.483 × 10⁻⁴ × C + 0.0059 (R² 0.9998). Su primera muestra, diluida 1:10, marca 0.312: en la cubeta hay (0.312 − 0.0059) ÷ 0.0008483 = 360.9 µg/mL, así que la muestra original tiene 3,608.8 µg/mL, es decir, 3.61 mg/mL. En sus 200 µL hay 721.8 µg de proteína.
Preguntas frecuentes
¿Tengo que restar el blanco?
Incluye el estándar de 0 en el ajuste: su absorbancia queda como la ordenada al origen. No lo restes dos veces.
¿Por qué mi curva se aplana en la parte de arriba?
Porque el colorante se satura. Quita los estándares más altos o diluye más la muestra para que las lecturas queden por debajo de 1.0 aproximadamente.
¿Qué R² es aceptable en una curva de Bradford?
Lo deseable es 0.99 o más. Si sale más bajo, revisa el pipeteo de los estándares, el tiempo de incubación y que las lecturas estén dentro del rango lineal.
¿A qué longitud de onda se lee el ensayo de Bradford?
A 595 nm, donde absorbe el complejo azul que forma el Coomassie G-250 al unirse a la proteína.
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